Agentes bacterianos, sensibilidad y resistencia a antibióticos en amígdalas resecadas en el Hospital de San José
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Resumen
Objetivo: Determinar agentes bacterianos presentes en amígdalas resecadas e identifi car la resistencia y sensibilidad a antibióticos. Diseño: Estudio de corte transversal. Métodos: Se incluyeron los pacientes llevados a amigdalectomía que cumplieran con una o más de las indicaciones quirúrgicas. Resultados: total, 79 pacientes. La indicación más frecuente fue amigdalitis recurrente (51,7%). Los gérmenes aerobios con mayor frecuencia fueron Haemophilus parainfl uenzae (32,7%), Staphylococcus aureus (30%) y Haempohilus infl uenzae (15,9%). El anaerobio más aislado fue Veillonella (40%). Los antibióticos con mayor sensibilidad para Haemophylus sp (parainfl uenzae e infl uenzae) fueron las cefalosporinas (100%) y ampicilina sulbactam (89%). La mayor resistencia fue trimetoprim sulfametoxazol (75%) y ampicilina (48.8%). Para el Staphylococcus aureus se encontró mayor sensibilidad a quinolonas (100%), clindamicina (92,3%), ampicilina sulbactam (88,8%), cefazolina (88,8%), oxacilina (88,4%) y resistencia a ampicilina (100%) y penicilina (84,6%). Conclusiones:, se considera tener presentes dichos antibióticos en cada una de estas indicaciones en el manejo de los pacientes. Conclusión: El estudio del tejido amigdalino después de la amigdalectomía nos da información confi able en comparación con otros métodos de identifi cación bacteriana.
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Este artículo es publicado por la Revista Acta de Otorrinolaringología & Cirugía de Cabeza y Cuello.
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eISSN: 2539-0856
ISSN: 0120-8411
Citas
Piedrola MD, Montiel QN, López RI, Monje VE, Casado Morente JC, Povedano RV, et al. [Present situation of antibiotic resistances in tonsillar infections]. Acta Otorrinolaringol Esp, 2006 Apr; 57 (4): 171-5.
Peyton S, Woolley A, W Peyton Shirley. Pharyngitis and Adenotonsillar disease. In: Paul W. Flint, Bruce H. Haughey, Valerie J. Lund, John K. Niparko, Mark A. Richardson, K. Thomas Robbins, et al. (Eds.). Cummings Otolaryngology: Head & Neck Surgery. 5th ed. Philadelphia, EE. UU.: Mosby; 2010, p. 2782-802.
Lindroos R. Bacteriology of the tonsil core in recurrent tonsillitis and tonsillar hyperplasia-a short review. Acta Otolaryngol Suppl, 2000; 543: 206-8.
Van Staaij BK, Van Den Akker EH, De Haas Van Dorsser EH, Fleer A, Hoes AW, Schilder AG. Does the tonsillar surface flora differ in children with and without tonsillar disease? Acta Otolaryngol, 2003 Sep; 123 (7): 873-8.
Stjernquist-Desatnik A, Holst E. Tonsillar microbial flora: comparison of recurrent tonsillitis and normal tonsils. Acta Otolaryngol, 1999 Jan; 119 (1): 102-6.
Ramírez A, Peidrola D, López A, Martínez MD, Ros MJ, Corral JL, et al. [Beta-hemolytic streptococci in tonsil hypertrophy and recurrent tonsillitis]. Enferm Infecc Microbiol Clin, 1997 Jun; 15 (6): 315-8.
Jeong JH, Lee DW, Ryu RA, Lee YS, Lee SH, Kang JO, et al. Bacteriologic comparison of tonsil core in recurrent tonsillitis and tonsillar hypertrophy. Laryngoscope, 2007 Dec; 117 (12): 2146-51.
Al-Mazrou KA, Al-Khattaf AS. Adherent biofilms in adenotonsillar diseases in children. Arch Otolaryngol Head Neck Surg, 2008 Jan; 134 (1): 20-3.